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CCK-8实验详解,必看! CCK-8,全称为Cell Counting Kit-8,是一种广泛用于细胞增殖和毒性检测的试剂。它具有高灵敏度、无毒性、操作简便和性能稳定等优点。以下是使用CCK-8进行细胞实验的详细步骤: 젧𛆨消化与离心 将处于对数期的贴壁细胞用胰酶消化,待细胞大部分脱落时,加入两倍胰酶体积的含血清培养基终止消化。 将消化后的细胞转移至离心管,用PBS缓冲液冲洗细胞培养瓶,将残留细胞冲洗下来并转移至离心管。 以1000r/min的速度离心3-5分钟,弃去上清液,用1ml含血清培养基重悬细胞。 𛆨计数与稀释 使用细胞计数仪或牛鲍计数板对细胞悬液进行计数,根据计数结果对细胞进行稀释,推荐浓度为5~10*10^5细胞/ml。 ꠦ姧细胞 选择96孔板,设置一个空白对照和7个实验组,每组设置3-5个复孔。每孔加入100ul稀释好的细胞悬液。 在边缘孔加入2滴PBS缓冲液或100-200ul培养基,以减少蒸发带来的影响。 细胞培养与药物处理 将接种好的96孔板放入孵箱,培养12-24小时,待细胞贴壁良好后,吸出各孔培养基。 空白组加入不含药物的培养基,实验组加入含不同浓度药物的培养基。根据药物作用时间,放入孵箱培养4小时、12小时或24小时。 CCK-8孵育与检测 药物处理相应时间后,再次吸出各孔培养基,加入含CCK-8的培养基,CCK-8占细胞培养基体积的1/10。 放入孵箱培养0.5-4小时,待颜色变为橙色即可检测。注意随时观察颜色变化,不宜时间过长。 数据处理 将96孔板取出,放入酶标仪检测,波长设为450nm。处理分析数据,得出实验结果。 通过以上步骤,您可以使用CCK-8进行细胞增殖和毒性检测,希望这些信息对您有所帮助!
MIC测试全攻略슰窠实验准备 Broth 溶液 离心管 支架 细菌 移液枪 移液枪头 96孔板 젥ꌦꤊ准备细菌悬液: 在37Ⰳ下将大肠杆菌和金黄色葡萄球菌分别培养24小时,培养基为MH琼脂或NA。 选取3-5个菌落,使用3ml Broth稀释细菌至0.5 McFarland标准(约1.5㗱0^8 CFU/mL)。可以通过比浊法测定浓度。进一步稀释使细菌最终浓度为5 㗠10^5 CFU/mL。 准备测试材料稀释系列: 在96孔板上进行两倍稀释。每孔加入100 MH Broth,第一列孔中加入100 母液,然后用移液器将其从第一孔稀释到下一孔(两倍稀释法),直到达到所需的最低浓度。最后弃去最后一孔中剩余的液体,确保每孔100 溶液。 加入细菌悬液: 将之前稀释好的细菌悬液按1:1的比例加入每个孔中(例如每孔加入100 细菌悬液)。此时每个孔中应含有200 溶液,其中100 是测试材料的不同稀释浓度,100 是细菌悬液。 对照组设立: 阳性对照孔:加入已知有效抗菌剂,如抗生素(可稀释到已知的抑菌浓度)。 阴性对照孔:仅加入培养基和细菌悬液,不添加测试材料。 空白对照孔:仅加入培养基,无细菌和测试材料。 孵育: 将96孔板覆盖好后,放入37Ⰳ的培养箱中孵育24小时。 结果观察: 每个小孔滴入细菌显色液。观察颜色变化。 通过以上步骤,你可以测定出最低抑菌浓度(MIC),了解测试材料对细菌的抑制效果。
CCK8实验攻略,轻松掌握! CCK8实验其实并不复杂,只需掌握一些关键步骤。以下是详细的操作指南: 制作标准曲线 计数细胞,按比例用培养基等比稀释成不同细胞浓度梯度,一般需要5-7个梯度,每组4-6个复孔。 接种细胞后培养2-4小时,使细胞贴壁。然后每100培养基中加入10 CCK-8试剂(注意不要产生气泡),继续培养1-4小时。用酶标仪测定450nm处的吸光度。 需培养液 可以先转染再种板。在10cm盘中转染,6小时后消化并重悬细胞,调整细胞密度至20000个/ml,种在96孔板中,每孔1000。种板时,用枪头吹吸细胞,彻底重悬并均匀分散。也可以同时进行转染和种板,转染6小时后换液,每孔100新鲜DMEM。 细胞增殖-毒性检测 在96孔板中接种细胞悬液(100/孔,每孔细胞数至少1000),预培养24小时。 向培养板加入不同浓度的待测药物。 将培养板在培养箱中孵育一段时间后,加入培养基(完全培养基或基础培养基均可),孵育6小时(具体时间根据实验决定),空白孔加入培养基。 向每孔加入10的CCK-8溶液(注意不要产生气泡),不用更换培养基。 将培养板置于培养箱内孵育1-4小时,用酶标仪测定450nm处的吸光度。 计算公式 细胞存活率=[(As-Ab)/(Ac-Ab)]x100% 抑制率=[(Ac-As)/(Ac-Ab)]x100% As:实验孔吸光度(含细胞、培养基、CCK-8溶液和药物溶液) Ac:对照孔吸光度(含细胞、培养基、CCK-8溶液,不含药物) Ab:空白孔吸光度(含培养基、CCK-8溶液,不含细胞、药物) 以上就是CCK8实验的详细操作过程,希望对你有所帮助!
젃CK-8实验注意事项全解析! 젧𛆨接种量:在96孔板中,贴壁细胞的最小接种量为1000个/孔(100培养基)。对于白细胞,接种量应不低于2500个/孔(100培养基)。若使用24孔板或6孔板,需提前计算每孔的接种量,并按培养基总体积的10%加入CCK-8溶液。 药物吸收考虑:在细胞毒性实验中,药物的吸收是一个关键因素。可以在加入药物的培养基中加入CCK-8,测定450nm的吸光度作为空白对照。 培养条件:在培养箱中孵育时,培养板最外一圈的孔容易干燥挥发,造成体积不准确,增加误差。建议最外一圈的孔只加PBS,不作为测定孔用。 ⏱️ 培养时间:加入待测物后,培养的具体时间取决于待测物质的性质和细胞的敏感性,如6、12、24、48h。实验时可以选择不同作用时间进行细胞毒性检测。 培养基更换:如果待检测物质有氧化性或还原性,在加入CCK-8之前应更换新鲜培养基,以去掉待测物质的影响。如果影响较小或没有影响,可以不更换培养基,直接扣除培养基中加入药物后的空白吸收。 显色时间:正常显色时间为1-4h,可以每半小时测定一次OD值,使其OD值保持在1-2之间后固定显色时间重复实验。 延长显色时间:如果显色不够,可以延长培养时间,特别是血液细胞需要较长的显色时间(5-6h)。 测定波长:对于高浑浊度的细胞悬液,建议采用双波长进行测定,检测波长450-490nm,参比波长600-650nm,推荐使用650nm。 保存方法:若暂时不测定OD值,可以在各孔中加入10 0.1 M的HCL溶液或1% w/v SDS溶液,室温避光保存,24h内测定OD值不会发生变化。 CCK-8保存:新鲜的CCK-8试剂为粉红色,储存时间过长则颜色加深、效率变低,最好不使用。通常情况下CCK-8试剂在0-5℃避光条件下可保存至少6个月,在-20℃下避光可以保存1年。
睁眼闭眼都在想96孔板杂排 心是慌的
跑了五个满满的96孔板,感觉自己二头日渐壮大的同时也要收获腱鞘炎了[猪头][猪头][猪头][猪头][猪头][猪头]
젅LISA实验必备五大技巧与细节 一、实验原理 ELISA实验利用抗原与抗体的特异性结合,通过酶标记放大信号,从而对样本中的目标物进行定量测定。 二、抗体与抗原的选择ꊩ择高特异性、高亲和力的抗体或抗原,以确保实验的准确性和灵敏度。 注意抗体或抗原的保存条件和使用方法,避免其失活或变性。 三、样本处理 验目的和样本类型,选择合适的样本处理方法,如稀释、离心、过滤等。 注意避免样本中的干扰物质对实验结果的影响,如非特异性结合物质、酶抑制剂等。 四、实验步骤 包被:选择合适的包被抗原或抗体,按照一定比例稀释后,加入96孔板中,确保每孔均匀覆盖。包被后,将孔板放入孵育箱中,进行一定时间的孵育,使抗原或抗体牢固吸附在孔板上。 封闭:使用封闭液封闭孔板中未结合位点,以减少非特异性结合。封闭后,同样需要进行孵育,并确保封闭液均匀覆盖每个孔。 加样:准确加入待测样本或标准品,确保每孔加样量一致。注意避免样本或标准品在孔壁上残留,影响结果的准确性。 孵育:将加样后的孔板放入孵育箱中,进行一段时间的孵育,使样本中的抗原或抗体与包被的抗体或抗原充分结合。控制孵育时间和温度,避免过长或过短的孵育时间。 洗涤:洗涤步骤是去除未结合物质的关键,要确保洗涤充分且不损伤已结合的抗原-抗体复合物。洗涤时要确保每个孔都充分洗涤,避免残留物质干扰结果。 加酶标抗体:加入酶标记的抗体,与已结合的抗原或抗体进行特异性结合。同样需要进行孵育和洗涤步骤,确保酶标抗体与抗原或抗体的结合牢固且纯净。 显色:加入显色底物,酶标抗体催化底物发生显色反应。控制显色时间和温度,确保显色反应充分且均匀。 终止与读数:加入终止液,停止显色反应。准确记录实验过程中的所有数据和观察结果,包括加样量、孵育时间、OD值等。目前商品化的试剂盒一般预先包被了抗体,活化后即可使用;具体步骤及实验条件需按照试剂盒说明书操作。 五、实验优化 根据实验结果和需要,可以调整实验条件,如孵育时间、温度、抗体浓度等,以优化实验结果。 通过设置不同的对照实验,如阳性对照、阴性对照和空白对照等,来监测实验的准确性和可靠性。
ꂃA试剂盒蛋白浓度测定实验 在进行蛋白研究前,精确测定蛋白浓度至关重要。BCA试剂盒是一种常用的蛋白浓度测定方法。 ᠂CA原理:碱性条件下,蛋白质与Cu2+结合生成络合物,将Cu2+还原为Cu+,BCA试剂与Cu+结合形成紫色络合物,562nm下测定其吸收值,从而计算蛋白浓度。 𞠂CA配制: 1️⃣ 蛋白标准品配制:溶解25mg蛋白标准品于1mL配制液中,得到25mg/mL的蛋白标准贮备液,再稀释50倍得到0.5mg/mL的工作液。 2️⃣ BCA工作液配制:根据样品数量及重复次数配制,如24个孔需总体积5.1ml,按50:1比例混合A、B试剂。 蛋白浓度检测:将蛋白标准品按0、1、2、4、8、12、16、20梯度加到96孔板中,补足至20,得到不同浓度梯度。 堥 样孵育:吸取20样品或标准品,加入BCA工作液,37Ⰳ孵育30min后冷却至室温。 测定:用酶标仪测量562nm吸光度,绘制标准曲线,计算样品蛋白浓度。 通过这一实验,我们可以准确地了解蛋白样品的浓度,为后续实验提供可靠的数据支持。ꀀ
MTT细胞增殖实验全流程详解 方法步骤: 标记96孔板:取5块96孔板,分别标记d1~d5。将每块板划分为四个区域,分别标记四种病毒名称。每个区域分为三组细胞:CON、NC、KD,每组细胞有5个副孔。准备好血球计数板。 细胞准备:将对数期细胞消化后,以4.5 1500 rpm离心3分钟,去掉上清液,用培养基重悬制成细胞悬液。 细胞计数:吸取10细胞悬液,沿盖玻片一边缓慢加入,进行细胞计数。 铺板:根据细胞生长速度决定铺板密度(多数为2000cell/well),铺板时注意混匀细胞。 调整细胞密度:统一铺好后,待细胞完全沉淀下来,在显微镜下观察各实验组的细胞密度。如果密度不均匀,则固定一组,微调其他组细胞的量(如:发现CON组细胞较多,则可再次铺入时,90~60%的量铺板)。再次铺入96孔板中。 加入PBS:在孔板周围一圈加入适量PBS,防止培养板中细胞液被烘干。放入细胞培养箱中培养。 MTT实验:细胞贴壁后,取出标记d1的96孔板,每孔加入20 5mg/ml的MTT,轻轻震荡混匀。 终止反应:反应4小时后,每孔加入100酸化异丙醇终止反应,震荡混匀。 检测OD值:放入培养箱孵育反应至少4小时,用酶标仪595nm检测OD值。 젥ꌥ理: MTT实验是一种常用的细胞增殖和细胞毒性的检测方法。通过测定活细胞数量来评估细胞的生长情况。 注意事项: 所有操作均在无菌条件下进行,确保实验结果的准确性。 实验过程中注意细胞密度的均匀性,避免影响实验结果。 实验材料: 96孔板 血球计数板 离心机 培养基 MTT溶液 酸化异丙醇 酶标仪 젩过以上步骤,您可以进行MTT细胞增殖实验,了解不同条件下细胞的生长情况。
为什么实验室宁愿扔掉枪头盒也不重复使用? 在实验室里,选择直接购买盒装枪头通常比重复使用更划算,也更省时间。今天做实验时,我算了一笔账:进行两个96孔板的PCR产物纯化需要两个小时,共用了22盒枪头,每盒60个(因为有折扣),总费用为1320元。如果我自己插枪头,就需要提前一天完成,而我的日工资是2000元。再加上散装枪头的原价,导师会花费比直接购买盒装枪头更多的钱,还耽误了一天的工作进度。 而且,实验室的技术员做同样的工作,每块板子的费用为1300元,四块板子就是5200元。自己做的工资加耗材费用也要超过5000元。找人做同样可以节省一天时间去做其他事情。 因此,通常导师不会让我们自己做PCR产物纯化,而是交给实验室技术员来完成。这样不仅节省时间,还能确保实验的顺利进行。
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