培养皿最新娱乐体验_培养皿规格及大小(2024年12月深度解析)
哺乳动物细胞培养:探索生命的奥秘 想象一下,把哺乳动物细胞放进培养皿里,给它们提供合适的营养和条件,它们就像在开一场细胞派对!这些细胞们互相交流、互相依赖,共同演绎出生命的华美乐章。 这场细胞之舞背后有着广泛而重要的应用。在医学研究中,哺乳动物细胞培养模型被用来研究疾病的发展机制和寻找治疗方法。这些细胞能模拟人体内的情况,为疾病的解读和治疗提供重要线索。슊哺乳动物细胞培养就像一场魔幻的视觉盛宴,让我们近距离感受生命的奇迹。如果你也对这个领域感到好奇,那就和我一起踏入这片神秘的细胞乐园吧!ꊊ下面是关于哺乳动物细胞培养的一些基本概念和步骤: 细胞系的选择 𑊩择适合培养的哺乳动物细胞系非常重要。常用的细胞系包括人类细胞系(如HEK293、HeLa)、小鼠细胞系(如NIH/3T3)和其他动物细胞系(如CHO)。选择细胞系时需要考虑其生长特性、稳定性和在所需实验中的适用性。 细胞培养基 𒊧𛆨培养基是提供细胞营养和生长因子的液体培养介质。常见的培养基包括DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)和RPMI 1640。此外,培养基通常会添加血清(如胎牛血清)和其他补充物(如氨基酸、维生素、抗生素等)。 培养条件 细胞需要在适宜的环境条件下培养。这包括恒定的温度(通常为37摄氏度)、适当的CO2浓度(通常为5%),以及衡量和调节培养基的pH值。 培养皿和培养技术 ꊥ觚培养皿包括培养瓶、细胞培养板和细胞培养皿。可以使用传统的培养方法,如悬浮培养、贴壁培养或旋转培养,根据细胞类型和实验要求选择适当的培养技术。 细胞检测和传代 스细胞的健康和生长,需要定期检测细胞的形态、增殖情况和纯度。当细胞达到一定的密度时,需要进行细胞传代,将细胞转移到新的培养容器中,以降低群体密度并维持细胞的增长状态。 在进行细胞培养实验时,需要严格控制培养条件和采用无菌技术,以避免细菌和真菌的污染,并确保实验结果的可靠性。
培养皿的正确放置技巧슰宝子们,实验室里的小秘密来啦!今天要跟大家聊聊那些看似不起眼但却超级重要的实验操作细节。想象一下,你在实验室里做实验,结果因为一些小疏忽导致实验失败,那可是很心痛的。所以今天就给大家分享一些培养皿放置的小技巧,保证你的实验顺利进行哦! 1️⃣ 确保实验台面干净整洁 台面:实验前一定要把实验台面擦得干干净净的,不留一丝灰尘,这样才能避免污染培养皿。 手部清洁:记得洗手,确保双手和工具都干净无菌,这可是防止污染的关键步骤哦。 2️⃣ 使用培养皿架保持稳定 젥🦞把灭菌后的培养皿放在培养皿架上,这样不仅稳当还防止手滑哦。 렩🥅触碰:放置时千万别碰到培养皿的内部和边缘,保持无菌状态,实验成功的几率更大。 3️⃣ 避免与其他材料接触 䠦⦉套:处理多个培养皿时,建议每次操作前都换手套,或者用消毒酒精清洁双手,交叉污染什么的就不怕啦。 렩离操作:特别是已经接种了微生物的培养皿,千万不要让它们和其他材料接触哦,隔离是最好的保护。 4️⃣ 定期检查培养皿状态 状态检查:定期查看培养皿有没有裂纹或破损,内部有没有霉菌或污染,这些都是影响实验结果的因素。 ⠥䄧:如果发现异常情况,马上报告或更换培养皿,实验的准确性和可靠性就有保障啦。 好啦,今天的培养皿放置小技巧就分享到这里啦!希望对你们的实验有所帮助。如果还有其他实验操作上的小疑问,欢迎在评论区留言哦,我们一起讨论!实验室小白也能轻松上手,快去试试吧~ꀀ
测肉桂酸羟化酶,我悟了! 最近在做肉桂酸-4-羟化酶含量的检测,发现了一些有趣的现象,跟大家分享一下。之前用6孔板和6cm的培养皿,结果总是测不出来,样品中的酶含量总是接近空白孔。后来改用10cm的大皿,终于看到了粉色沉淀,上清液也呈淡粉色,OD值终于不再是接近于空白孔的数值了。 实验过程中的小技巧 离心管内液体颜色浅的问题:之前离心管内的液体颜色很浅,甚至没有颜色。6孔板和6cm的培养皿都不行。只有用了10cm的大皿后,得到的样品才呈现出浅粉色。 金属浴的使用:100摄氏度60分钟的反应可以用金属浴,比水浴锅方便很多。不过要注意,反应过程中会产生气体,金属浴的盖子一定要压紧,否则会炸盖。 封口膜的问题:金属浴后,封口膜会粘在试管上,进行离心时管子容易卡在离心机里。建议金属浴后可以转移到新的管子再离心。 蛋白含量检测:不要忘记留取检测蛋白含量的样品,这对后续数据分析很重要。 个人小结 这次实验的教训告诉我,选择合适的容器和正确的操作方法对实验结果至关重要。希望这些经验能对大家有所帮助! 如果你也在做类似的实验,不妨试试这些小技巧,或许能帮你省去不少麻烦。祝大家实验顺利!ꀀ
如何正确放置培养皿ꊥ大家好!今天我们来聊聊如何正确放置培养皿,这可是实验操作中的关键一步哦! 准备工作襼始实验之前,确保你的实验台面干净整洁,双手和工具也是干干净净的。这样才能避免污染,让实验结果更准确。 清洗培养皿 用去离子水或蒸馏水冲洗培养皿,然后用无菌方法清洗。你可以选择把培养皿放进高压蒸汽灭菌器中进行高温高压灭菌,或者用紫外线灭菌。无论哪种方法,都要确保培养皿是干净的。 放置培养皿抧后的培养皿要放在实验台上,可以用培养皿架来支撑,保持稳定。记住,不要用手直接触碰培养皿的内部或边缘,这样会污染它。 避免交叉污染능覔🦗尽量避免与其他材料接触,特别是那些已经接种了微生物的培养皿。如果你需要处理多个培养皿,最好在每次操作前换一次手套,或者用消毒酒精清洁双手。 定期检查培养皿 最后,定期检查培养皿是否有裂纹或破损,还要观察内部是否有异常现象,比如霉菌或细胞污染。一旦发现异常,立即报告或更换培养皿。 通过以上步骤的正确操作,你可以有效避免污染和交叉感染,确保实验的准确性和可靠性。学会了吗?赶紧收藏起来吧! 希望这篇文章对你有帮助,祝你实验顺利!
【「长沙医生提醒养黏菌当宠物有隐患」】 最近,年轻人甚至小学生人群中流行起了养黏菌。这种类似实验室培养皿里的生物培养,成了年轻人的新宠。网友纷纷在社交媒体上晒出所养黏菌的各种状态。在某购物平台,黏菌宠物销量第一的商家显示从湖南发货,目前已售出4000余单,卖价从49元至159元不等。那么,黏菌到底是什么?养黏菌会带来健康风险吗?一起来看看@大众卫生报@湖南中医药大学第一附属医院医学检验中心副主任、副主任技师宁兴旺的科普...「黏菌宠物是否适合室内养」
小鼠胚胎成纤维细胞的分离与冻存指南 分离原代 MEF 细胞 给每只孕鼠腹腔注射 0.5 ml Avertin,待小鼠麻醉后,进行断颈处死。 将孕鼠放入盛有 75% 乙醇的容器中浸泡 2~5 min 进行消毒。 用无菌的剪刀和镊子剪开孕鼠的腹腔皮肤,暴露腹腔,注意不要剪开腹膜。 换一副无菌的剪刀和镊子,剪开腹腔取出子宫,放在预先准备好的无菌平皿中。处理掉孕鼠的尸体。 用吸管将子宫用 10 ml PBS 冲洗三遍。 用眼科剪和眼科镊切开囊胚,将胚胎游离。 将胚胎放入新的无菌培养皿中,用 10 ml PBS 洗三遍。 计数分离得到的胚胎数。 去除胚胎的头、尾、四肢及内脏组织。注意:内脏组织颜色较深。 将胚胎放入新的养皿中用 10 ml PBS 洗三遍。 吸去多余的 PBS。 使用弯头眼科剪将组织剪成小颗粒。注意:大约用 6~10 min 剪切组织。剪碎时,用一个手顶住培养皿,与桌面保持小角度,使组织集中在培养皿的一侧,提高剪切的效率。 加 2 ml 胰蛋白酶,继续剪切几分钟,使组织颗粒更小。 再补加 5 ml 胰蛋白酶,用吸管充分将组织和胰蛋白酶混匀,将培养皿 37 ℃ 孵育 20~30 min,中间可取出用无菌 25 ml 吸管反复吹吸几次。注意:在孵育过程中,可以从第一步开始对另一只小鼠进行处理和制备。 消化结束,加大约 20 ml MEF-I 培养基,用 10 ml 移液管把黏性物质混匀,使黏性物质基本分散,吸取上面的细胞悬液。剩余团块不能再用胰蛋白酶消化,否则细胞活力下降。 用 200 目的筛网过滤,注意别让黏性物质堵塞网孔。 过滤后,将组织消化液转移入 50 ml 离心管中,200 g 离心 5 min。 去上清液,用 MEF-C 培养基重悬,分装入 T75 培养瓶或 10 cm 培养皿中培养,每个瓶或皿原代培养大约 10 个胚胎消化得到的细胞。 培养过夜,显微镜下观察,如细胞汇合已超过 90%,可直接进行收集和冻存;如细胞汇合还不足 90%,继续培养一天。 吸去多余的培养基,加入新鲜 MEF-C 培养基 10 ml。 培养细胞直至培养瓶中细胞汇合超过 90%。注意:细胞中可能会混有部分组织块。
三种常见菌种的分离方法详解 𑠤壤中分离放线菌 𑊥𖤽培养基:首先,制作高氏一号培养基。趁热将其注入培养皿中,待其凝固成平板后备用。 土壤处理:称取10克土壤,放入装有100毫升无菌水的锥形瓶中。加入10%的酚10滴,以抑制细菌生长。振荡10分钟,制成10-1菌悬液。然后按照连续稀释分离法,进一步制成10-3菌悬液。 接种与培养:用移液管吸取0.1毫升10^-3菌悬液,注入平板培养基上。用无菌玻璃刮刀将菌悬液均匀涂抹在整个培养基上。将培养皿倒置于25-30℃温箱中,培养7-10天。如果菌落的硬度较大,干燥致密,且与基质紧密结合,不易被针挑起,这就是放线菌菌落。 分离霉菌 𖤽培养基:制作豆芽汗葡萄糖培养基,并添加80%的乳酸数滴,以抑制细菌生长。将培养基倒入培养皿中,凝成平板,待用。 土壤处理:称取10克土壤,按上述分离放线菌的方法制成10^-4或10^-5的菌悬液。 接种与培养:取0.1毫升菌悬液注入培养皿内培养基上,用玻璃刮刀涂抹均匀。然后将培养皿倒置于25-30℃温箱内培养3-4天。霉菌菌落常长成绒状、棉絮状或蜘蛛网状,可根据这一特征寻找霉菌菌落。 从饮水中分离大肠杆菌 犥𖤽培养基:制作伊红美蓝培养基,趁热注入培养皿中,凝成平板,待用。 水样处理:用灭过菌的锥形瓶盛取河水或沟水,按1:10稀释。 接种与培养:取0.1毫升稀释液接种于伊红美蓝培养基上。用平板划线分离法进行分离。将划线后的培养皿倒置37℃温箱中培养18-24小时。培养基中会出现大肠杆菌菌落,菌落中心呈暗蓝黑色,发金属光泽。 分离与纯化:将菌落接种于斜面培养基上(由营养琼脂培养基制成)。
培养皿里的浮华:艺术家的自然探索之旅 物艺术家Suzanne Anker通过培养皿创造了一个色彩斑斓的微型世界,探索21世纪自然如何被改变。她的作品揭示了遗传学、气候变化、物种灭绝和有毒物质降解的复杂关系,呼吁人们关注生命之美。 在作品《Twilight》和《Rainbow Loom》中,Anker将一系列自然物和人造物按彩虹色顺序排列在培养皿中。这些培养皿暗指正在被调查的东西,在这个真实或想象的容器中,一个概念或物质如果允许发酵,就会萌发其隐藏的另一维度——如在生产过盛的年代,人造无机物早已成为“自然”中的一部分。 《Vanitas (in a Petri dish)》则是俯拍这“豪华”景观的影像作品。Vanitas在17世纪荷兰静物画中常见,经常描绘腐烂的水果、浪费的盛宴残余、生命短暂的昆虫、转瞬即逝的泡泡、骨骸、蜡烛,用于警示死亡的不可避免,财富荣华的虚无。 《Remote Sensing》基于这种影像,捕捉并重新解析照片的颜色密度,通过技术进一步转化为3D打印的人工地形。模糊、像素画的内容阻碍了原有的现场调查。
贴壁细胞传代实验全攻略 细胞复苏步骤: 首先,使用前用紫外线照射超净工作台30分钟,并用75%酒精擦拭台面,保持干净整洁。使用时一定要打开通风。 将冻存细胞从-80度冰箱或液氮罐中取出,立即放入37℃恒温水浴中解冻,不停晃动以加速化冻。 将化冻的细胞液转移至装有3mlDMEM完全培养基的5ml离心管中,吸打均匀。注意液体不要留在瓶口或瓶盖上,避免污染。 复苏细胞时,离心机提前降温至4℃,以1000rpm的转速离心5分钟并弃上清(离心的速度和时间根据细胞系不同有所差异)。 用3mlDMEM完全培养基重悬细胞,并转移至6cm细胞培养皿中,放入细胞培养箱。 在显微镜下观察复苏细胞的状态,并及时(每48小时)更换DMEM完全培养基。 当细胞密度占显微镜视野80%-90%时,进行细胞传代。 贴壁细胞传代步骤: 弃置原培养皿中的培养基,从培养皿边缘加入2ml预热的PBS平衡盐溶液润洗细胞(注意不要直接冲到细胞表面),并弃置。 沿培养基侧壁加入1ml预热的0.25%(w/v)Trypsin-EDTA,使胰蛋白酶完全覆盖细胞表面。于细胞培养箱中孵育2分钟(孵育时间根据细胞系不同有所差异,如不确定细胞消化时间,每隔1分钟取出在显微镜下观察,约有50-70%细胞飘起,即可继续操作)。 向培养皿中加入1ml完全培养基中和Trypsin的作用,并轻轻吸打细胞表层数次。将细胞悬液转移到5ml离心管中,在室温下以1000rpm的转速离心3分钟。 小心弃去离心管中的上清液,使用1ml完全培养基轻轻重悬细胞沉淀,使其完全被吹打为单个细胞状态,尽量减少泡沫的产生。 进行细胞计数后以1:3(1:3~1:6均可)的比例进行细胞传代。 取三只新6cm细胞培养皿,每只培养皿中加入3ml完全培养基,将细胞悬液平均分配至三只培养皿中,盖上盖子后,按照画“十字”的操作,将细胞摇匀。 将细胞培养皿放入细胞培养箱中,继续培养,每天观察细胞状态并及时更换培养液。
「开了包的卫生巾1个月内用完」 经血是细菌的培养皿,即使量不多,也要勤换卫生巾,最好2-4小时更换一次。使用卫生棉条时,单次时间也不要超过6-8小时。 [话筒]特别提醒,更换前卫生巾和卫生棉条前,一定要先洗手!因为在拆封、粘贴等过程中,会将手上的细菌带到卫生用品上。此外,还有这些注意事项—— ① 不要放在阴暗潮湿的卫生间里; ②「不建议用有香味的卫生巾」; ③ 一般的卫生巾保质期为2~3年,可一旦开封后,建议在1个月内用完。如果没用完,一定要放在通风干燥的环境中,最好用密封袋保存。 ④ 过期的卫生巾不要使用;受潮、发霉、细菌感染的坚决不能再用!「小卫辟谣问答」(广东疾控、深圳市妇幼保健院)
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